PROPAGAÇÃO IN VITRO DE JEQUITIBÁ-BRANCO (Cariniana estrellensis): UMA ALTERNATIVA PARA PROGRAMAS DE REFLORESTAMENTO

Autores

  • B. É. S. Albino
  • R. A. Canatto
  • A. T. Cordeiro
  • C. H. Fukushima
  • A. M. Pilon

DOI:

https://doi.org/10.18011/bioeng2019v13n2p88-99

Palavras-chave:

florestais nativas, germinação, micropropagação

Resumo

O objetivo deste trabalho foi determinar um protocolo de micropropagação da espécie jequitibá-branco (Cariniana estrellensis). As sementes foram incubadas em meio Murashige e Skoog (MS). O delineamento utilizado foi o inteiramente casualizado. Os tratamentos de desinfestação consistiram de imersão das sementes em solução de hipoclorito de sódio (NaClO) por diferentes tempos (5, 10, 15 e 20 minutos). Para a multiplicação in vitro, ápices caulinares, obtidos de vitroplantas, foram inoculados em meio de cultura MS contendo diferentes concentrações (0; 0,5; 1,0; 2,0 mg L-1) de 6-benzilaminopurina (BAP) e cinetina (KIN). No enraizamento in vitro das brotações foram utilizadas diferentes concentrações de ácido indol-3-butírico (AIB) e ácido 1-naftaleno acético (ANA) (0; 0,5; 1 mg L-1). A incubação dos tubos foi realizada no claro em sala de crescimento. Observou-se que a desinfestação utilizando NaClO por um período de tempo de 5 minutos proporcionou melhor descontaminação e germinação das sementes. A utilização de 1 mg L-1 de BAP adicionada ao meio de cultivo foi eficaz para a formação de brotações na etapa de multiplicação in vitro. A adição de 0,5 mg L-1 da auxina AIB ao meio de cultivo proporcionou melhor formação de raízes nas brotações, que após 30 dias de aclimatização, tiveram uma taxa média de sobrevivência de 65%. Portanto é necessária a utilização de reguladores de crescimento para a multiplicação in vitro de C. estrellensis, sendo possível obter mudas micropropagadas da espécie nas condições do presente trabalho.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

AJITKUMAR, D.; SEENI, S.; Rapid clonal multiplication through in vitro axillary shoot proliferation of aegle marmelos (L.) corr a medicinal tree. Plant Cell Reports, v. 17: 422-426, 1998.

ANDRADE, M.W.; LUZ, J. M. Q.; LACERDA, A. S.; MELO, P. R. A.; Micropropagação da aroeira (Myracrodruon urundeuva Fr. All). Ciências Agrotécnica, v. 24: 174-180, 2000.

ARAGÃO, V. P. M.; NAVARRO, B. V.; SILVA, A. T.; SILVEIRA, V.; SANTA-CATARINA, C.; Micropropagation of Cariniana legalis (Martius) O. Kuntze, an endangered hardwood tree from the Brazilian Atlantic Forest. Plant Cell Culture & Micropropagation, v. 13 (2): 41-50, 2017.

ASSIS, T. F.; TEIXEIRA, S. L.; Enraizamento de plantas lenhosas. In: TORRES, A. C.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. A.; Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília, ABCTP/EMBRAPA – CNPH: 262-297, 1998.

AUGUSTO, C. M. S.; Micropropagação da amoreira-preta cv. Brazos. Dissertação de mestrado. Universidade Federal do Paraná, UFPR, 116p, 2001.

BANDEIRA, F. S.; XAVIER, A.; OTONI, W. C.; LANI, E. R. G.; Aclimatização ex vitro de plantas propagadas pela enxertia in vitro de Eucalyptus urophylla x E. grandis. Revista Árvore, v. 3, 773-781, 2007.

BASSAN, J. S.; Comportamento in vitro de canafístula [(Peltophorum dubium (Sprengel) Taubert)]. Dissertação Mestrado. Universidade Federal de Pelotas, UFPEL, 88p, 2006.

BASSAN, J. S.; REINIGER, L. R. S.; ROCHA, B. H. G.; SEVERO, C. R. P.; FLÔRES, A. V.; Oxidação fenólica, tipo de explante e meios de cultura no estabelecimento in vitro de Canafístula (Peltophorum dubium (Spreng.) Taub.). Ciência Florestal, v. 16(1): 381-390, 2006.

BORGATTO, F.; HAYASHI, T. K.; Biotecnologia de plantas. In: CASTRO, P. R. C.; SENA, J. O. A.; KLUGE.; R. A.; Introdução à fisiologia do desenvolvimento vegetal. Maringá, Eduem: 227-254, 2002.

CANATTO, R. A.; ALBINO, B. E. S.; CORDEIRO, A. T.; Propagação in vitro de sucupira branca (Pterodon emarginatus Vogel): uma espécie florestal nativa. Periódico eletrônico Fórum ambiental da alta Paulista. v. 12(3): 76-88, 2016.

CARVALHO, J. F. R. P.; CARVALHO, C. R.; OTONI, W. C.; Regeneração in vitro de urucum (Bixa orellana L.) a partir de diferentes tipos de explantes. Revista Árvore, v. 29: 887-895, 2005.

CARVALHO, P. R.; Espécies arbóreas brasileiras. Brasília, Embrapa Informação Tecnológica; Colombo, PR: Embrapa. Florestas, 2003.

CHAVES, A. C.; SCHUCH, M. W.; ERIG, A. C.; Estabelecimento e multiplicação in vitro de Physalis peruviana L. Ciência Agrotécnica, v. (29): 1281-1287, 2005.

DIAS, S.; ARAÚJO, T. O.; SARTOR, F. R.; FUKUSHIMA, C. H.; PILON, A. M.; Desinfestação de sementes de Jequitibá-branco para propagação in vitro. I Simpósio Internacional de Botânica Aplicada e I Simpósio Nacional de Frutíferas do Norte e Nordeste da UFLA. Lavras, pp. 35, 2012.

ERIG, A. C.; SCHUCH, M. W.; Tipo de explante e controle da contaminação e oxidação no estabelecimento in vitro de plantas de macieira (Malus domestica Borkh.) cvs. Galaxy, Maxigala e Mastergala. Revista Brasileira Agrociência, v. (9): 221-227, 2003.

FLORES, R.; STEFANELLO, S.; FRANCO, E. T. H.; MANTOVANI, N.; Regeneração in vitro de espinheira-santa (Maytenus ilicifolia Mart.). Revista Brasileira de Agrociência, v. 4: 201-205, 1998.

GOLLE, D. P.; Germinação in vitro de Pinus taeda L. a partir de sementes selecionadas. Dissertação de mestrado. Universidade Federal de Santa Maria, UFSM, 97p, 2007.

GRATTAPAGLIA, D.; MACHADO, M. A.; Micropropagação. In: TORRES, A. C.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. A.; Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília: Embrapa-SPI/Embrapa–CNPH: 183-260, 1998.

KIRST, M.; SEPEL, L. M. N.; Micropropagação de Cedrella fissilis Vellozo a partir de ápices de plantas. Simpósio sobre ecossistema naturais do Mercosul. Santa Maria. pp. 119-126, 1996.

LEITZKE, L. N.; DAMIANI, C. R.; SCHUCH, M. W.; Influência do meio de cultura, tipo e concentração de citocininas na multiplicação in vitro de amoreira-preta e framboeseira. Ciência e Agrotecnologia, v. 34: 352-360, 2010.

LORENZI, H.; Árvores brasileiras. Nova Odessa, Editora Plantarum: 352, 1992.

MÁXIMO, W. P. F.; SANTOS, B. R.; MARTINS, J. P. R.; BARBOSA, S.; BEIJO, L. A.; PAIVA, L. V.; Influência da cinetina na multiplicação in vitro de Handroanthus impetiginosus Mattos. XIX Congresso de pós-graduação da UFLA, Lavras, pp. 56, 2010.

MEDEIROS, J. D.; A biotecnologia e a extinção de espécies. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, v. 30(1): 109-113, 2003.

MELO, B.; PINTO, J. E. B. P.; LUZ, J. M. Q.; PEIXOTO, J. R.; JULIATTI, F. C.; Efeitos de ANA e AIB in vitro no enraizamento e crescimento da parte aérea da plântula de Guarirobeira [Syagrus oleracea (Mart) Becc.]. Bioscience Journal, v. 17: 49-59, 2001.

MOYO, M.; FINNIE, J. F.; VAN STADEN, J.; Recalcitrant effects associated with the development of basal callus-like tissue on caulogenesis and rhizogenesis in Sclerocarya birrea. Plant Growth Regulation, v. 63(1): 187–195, 2011.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F.; A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15(1): 473-497, 1962.

OLIVEIRA, L. S.; DIAS, P. C.; BRONDANI, G. E.; Micropropagação de espécies florestais brasileiras. Pesquisa Florestal Brasileira, 33: 445-460, 2013.

SANTOS, P. M. D.; Biometria, conservação de germoplasma e multiplicação in vitro de jequitibás-rosa do sul de minas gerais. Dissertação de mestrado. Universidade Federal de Alfenas, UNIFAL-MG, 79p, 2016.

SILVA, L. F.; SILVA, M. L.; CORDEIRO, S. A.; Análise econômica de plantios de Jequitibá- branco (Cariniana estrellensis). Revista Agrogeoambiental, v. 4: 1-10, 2012.

SOUZA, A. S.; JUNGHANS, T. G.; Introdução à micropropagação de plantas. Cruz das Almas, Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical: 152, 2006.

SOUZA, A. V.; PEREIRA, M. A. S.; Enraizamento de plantas cultivadas in vitro. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v. 9: 103-117, 2007.

STOYNOVA, B. E.; KARANOV, E.; PETROV. P.; HALL, M. A.; Cell division and cell expansion in cotyledons of Arabidopsis seedlings. New Physiologist, v. 162: 471-480, 2004.

THORPE, T. A.; HARRA, Y. I. S.; KUMAR, P. P.; Application and micropropagation to forestry. In: DEBERGH, P. C.; ZIMMERMAN, R. H.; Micropropagation: technology and application, Dordrecht Kluwer Academic Pu: 311-336, 1991.

TORRES, A. C.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. Á.; Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas. Brasília, Embrapa: 509, 1998.

HERNANDEZ, W.; XAVIER, A.; PAIVA, H. N.; WENDLING, I.; Propagação vegetativa do jequitibá-rosa (Cariniana estrellensis (Raddi) kuntze) por estaquia. Revista Árvore, v. 37(5): 955-967, 2013.

ZAYAT, A. G.; RANAL, M. A.; Germinação de sementes de capiçova. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 32: 71-80, 1997.

Downloads

Publicado

24-06-2019

Como Citar

Albino, B. É. S., Canatto, R. A., Cordeiro, A. T., Fukushima, C. H., & Pilon, A. M. (2019). PROPAGAÇÃO IN VITRO DE JEQUITIBÁ-BRANCO (Cariniana estrellensis): UMA ALTERNATIVA PARA PROGRAMAS DE REFLORESTAMENTO. Revista Brasileira De Engenharia De Biossistemas, 13(2), 88–99. https://doi.org/10.18011/bioeng2019v13n2p88-99

Edição

Seção

Regular Section